植物DNA提取的方法 |
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1 植物材料 螺旋藻、水稻、烟草 2 试剂和溶液 ( 1 ) 20 × SSC : 3mol/L NaCl 、 0.3 mol/L 柠檬酸钠, PH8.0 ; ( 2 )溶菌酶、 10μg/μl RNase 、 10 % SDS (均为 Sigma 产品); ( 3 )酚:氯仿:异戊醇= 25 : 24 : 1 ; ( 4 ) TE : 10mmol/L Tris-HCl ; 1mmol/L EDTA , PH7.6 3 提取步骤 收集对数生长期的螺旋藻细胞,悬浮于 5 倍体积( V/W )含 2mg/ml 溶菌酶的 20 × SSC 中,室温保持 10min ,偶尔摇动混匀。水稻幼苗和烟草嫩叶在液氮中研磨成粉末后,立即用 5 倍体积的 20 × SSC 悬浮,并轻轻拌匀。上述悬浮液在冰上先放置 3min ,然后加入 10 % SDS 至终浓度为 2 %,混匀;继续放置 10min 后,在 4 ℃用 11000 × g 离心 15min 。上清液转移至新的离心管中,并用相同体积的 TE 稀释,再加入 RNase 至终浓度为 10μg/ml ,室温放置 30min ,然后用酚:氯仿:异戊醇抽提一次。水相转移至新的离心管中,加入 0.6 倍体积的异丙醇,室温置数分钟。 11000 × g 离心 15min ,所得的 DNA 沉淀用 70 %的乙醇洗两次后,真空抽干或自然干燥,最后溶于适量的 TE 中。 注:20 × SSC 悬浮液中加入 10 % SDS 至终浓度为 2 %时,溶液会出现白色絮状沉淀,表明蛋白质已经变性。这是本方法的特点之一。通过变性后离心而不是常用的多次酚抽的方法除去绝大多数蛋白质。离心所得的上清液需要用 TE 稀释,这是因为溶液中盐浓度较高。如不稀释, RNase 无法起作用;而且再沉淀 DNA 时,如用乙醇会将溶液中的盐析出,如用异戊醇则形成两相的界面。将溶液中盐的浓度降低后,就解决乐这些问题。但加大稀释 TE 的体积,对于 DNA 的产量并无非常明显的作用,故用等体积的 TE 稀释即可。 DNA 抽提液经 RNase 酶解后,再用酚:氯仿:异戊醇抽提一次,用于除去剩余的蛋白质和酶。 |